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产品基本说明:
本试剂盒采用高盐法提取血液中的基因组DNA,可Γ大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大,纯度高,质量稳定可靠。 使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。 |
离心柱式血液基因组提取试剂盒
产品货号:28103
产品规格:50次/100次/200次
产品简介:
本试剂盒采用高盐法提取血液中的基因组DNA,可Γ大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大,纯度高,质量稳定可靠。
使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。
自备试剂:无水乙醇。使用前Buffer PW50次加入39ml无水乙醇/100次加入77ml无水乙醇/200次加入144ml无水乙醇
包装清单:
产品名称 | 50次包装 | 100次包装 | 200次包装 | 储存条件 |
Buffer A | 25ml | 50ml | 100ml | 室温 |
Buffer B | 10ml | 20ml | 35ml | 室温 |
Buffer PG | 25ml | 50ml | 95ml | 室温 |
Buffer PS | 15ml | 25ml | 45ml | 室温 |
Buffer PW | 9ml | 18ml | 36ml | 室温 |
Buffer EB | 5ml | 10ml | 20ml | 室温 |
Proteinase K溶液 | 0.4ml | 0.7ml | 1.4ml | -20℃ |
Spin Columns | 50个 | 100个 | 200个 | 室温 |
Collection Tubes | 50个 | 100个 | 200个 | 室温 |
操作步骤:
以下步骤以提取2mL血液中基因组为例,具体实验可根据血液量等比例减少。
1. 于离心管中加入2mLBuffer A和2mL预冷的超纯水。上下颠倒6-8次,冰上孵育2-3min。
2. 3500rpm离心15min,弃上清。
3. 加入150μl Buffer B,剧烈涡旋30-60s至沉淀重新散裂,加入5μl Proteinase K溶液,充分颠倒混匀,56℃放置10 min,其间颠倒混匀数次,溶液应变清亮(如溶液未彻底变清亮,请延长裂解时间至溶液清亮为止)。
注意:加入缓冲液Buffer B时可能会产生白色沉淀,一般37℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA不纯,需等比例补加Buffer B及Proteinase K。当血液体积≤200μl且没有采用红细胞裂解处理,或是样本储存条件不佳,水浴后颜色可能为深褐色,注意溶液中没有团块等沉淀。
4. 加入3倍体积的 Buffer PG(约0.45mL),涡旋充分混匀。
5. 柱平衡:向已装入收集管(Collection Tubes)中的吸附柱(Spin Columns)中加入200μl Buffer PS,12000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
6. 将步骤3所得溶液加入到已装入收集管的吸附柱中,室温放置2分钟,12000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中(如步骤3所得溶液体积过大,可分次加入吸附柱中,12000 rpm离心1分钟,弃流穿液)。
7. 向吸附柱中加入450 μl Buffer PW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
注意:如果纯化的DNA用于盐敏感的实验(例如平末端连接或直接测序),建议加入Buffer PW静置2-5分钟再离心。
8. 重复步骤6。
9. 12000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
10. 将吸附柱放到一个新的1.5 ml离心管(自备)中,向吸附膜中间位置悬空滴加50μlBuffer EB,室温放置2分钟。12000 rpm离心1分钟,收集DNA溶液。-20℃保存DNA。
注意:
1) 洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗脱液,应保证其pH值在7.0-8.5之间(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)。
2) 为了提高基因组提取量,可将离心得到的溶液重新加到吸附柱中,室温放置2分钟,12000 rpm离心1分钟。
3) 洗脱体积不应小于30μl,体积过少会影响回收效率。
注意事项:
1. Γ次使用前应按照试剂瓶标签的说明在Buffer PW中加入无水乙醇。
2. 若Buffer B中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。
3. 所有离心步骤均可室温下进行。
产品介绍: